中枢神经系统疾
。–entral nervous system, CNS）是全球疾病的主要原因之一，其中相当比例的病例与遗传异常直接相关，由于血脑屏障的存在以及CNS疾病本身的复杂性，传统小分子与生物大分子药物难以奏效，约95%的患者至今无治愈手段
。

以腺相关病毒（AAV）为载体的基因疗法因其低免疫原性以及单次给药即可实现长期转基因表达的特性，被视为最具变革潜力的治疗路径之一
。然而，系统性静脉给药受血脑屏障阻隔、脱靶效应、免疫反应和载体损耗等多重限制；相比之下，对于帕金森病等病灶相对局限的中枢疾病，脑实质内直接注射能够以较低剂量将载体精准递送至目标脑区，是当前主流的给药策略，但其临床应用始终受限于载体在脑内的扩散能力
。

AAV进入细胞的方式是从衣壳结合到细胞表面的聚糖或糖复合物开始的，这促进了衣壳与细胞表面的共受体相互作用，实现内化
。AAV5进入细胞高度依赖细胞表面唾液酸（N-linked (α2-3) sialic acid, SIA）的结合，随后再经由通用AAV受体（AAVR）介导的内吞作用进入细胞
。然而，大脑是人体唾液酸含量最高的器官，且AAV5最初分离自人皮肤，高浓度的唾液酸可能竞争性阻碍病毒与细胞受体的有效结合，成为限制其脑内转导效率的隐形屏障
。

2025年12月，Molecular Therapy: Methods & Clinical Development杂志发表了题为Modified AAV5 capsid for improved brain biodistribution following direct injection in preclinical models的研究成果，该研究团队通过对AAV5衣壳进行单氨基酸理性突变（M569V），构建了新型变体AAV5neo
。该变体摆脱了转导对唾液酸的依赖，在小鼠、小型猪与非人灵长类多物种模型中均展现出更优异转导效率和更广泛的脑内分布，仅需约1/10的剂量即可达到其亲本AAV5的治疗效果，为中枢基因治疗的临床优化提供了重要的载体工具
。

体外功能表征

AAV5neo转导不依赖SIA，

保留AAVR结合通路

研究团队首先在多种体外细胞系（COS-1, HEK293T, SH-SY5Y, Huh7）中对AAV5neo的转导特性进行了全面表征，结果显示，AAV5neo均可成功转导所有受试细胞系，但转导水平低于AAV5（图1A,B）
。为排除检测时间窗口的影响，研究团队利用人前脑类器官进行了长达3周的长期观察，发现随着培养时间延长，AAV5neo和AAV5转导的阳性细胞比例均持续上升，但AAV5neo转导的EGFP阳性细胞数始终低于AAV5（图1C），这提示了AAV5neo在体外细胞实验中会降低转导效率
。

基于上述现象，研究团队通过酶切与竞争实验开展了机制验证，以评估AAV5neo对SIA依赖特性的改变
。神经氨酸酶酶切实验显示，切除细胞表面末端唾液酸残基后，AAV5的转导效率下降约70%，而AAV5neo的转导活性未受显著影响，提示AAV5neo的细胞转导不依赖细胞表面唾液酸（图1D）
。AAVR抗体阻断实验则显示，封闭细胞表面AAV通用受体AAVR（KIAA0319L）后，AAV5和AAV5neo的转导效率均下降约80%（图1E），提示了AAV5neo依然严格依赖AAVR介导的经典入胞途径完成细胞内化
。

大脑中含量最高的唾液酸形式为N-乙酰神经氨酸（Neu5Ac），为模拟脑内微环境，研究团队开展了Neu5Ac竞争性抑制实验
。结果显示随着Neu5Ac浓度升高，AAV5的转导效率呈剂量依赖性下降；而AAV5neo在任何浓度下均不受影响，反而在高浓度下出现相对活性提升（图1F）
。进一步的MOI梯度实验显示，Neu5Ac对AAV5的抑制作用在低MOI下更为显著（MOI为1E3时抑制率约80%），这一特性与脑内远端区域病毒浓度低的生理场景高度吻合，提示AAV5在脑内扩散过程中，会因唾液酸的竞争性抑制而难以在低浓度下实现有效转导，而AAV5neo则可突破这一限制
。

小鼠全脑成像

AAV5neo扩散能力强转导效率高

体外实验证实了AAV5neo的唾液酸非依赖特性，研究团队随后进行体内验证，分别将AAV5-CBA-EGFP和AAV5neo-CBA-EGFP注射小鼠纹状体
。四周后切片发现，AAV5neo携带的EGFP信号在脑内扩散范围显著高于AAV5，且呈剂量依赖性
。高剂量下（1E11GC）AAV5neo在皮层、海马、纹状体、丘脑、下丘脑等多个脑区的转导面积均显著高于亲本AAV5（图2A,B），提示其具备更广泛的脑内扩散能力
。

进一步发现，在喙侧皮层、尾侧皮层、纹状体、丘脑与小脑五个脑区中，两种载体的基因组拷贝数无显著差异，说明两者在脑内的物理扩散程度相近
。而EGFP mRNA定量结果显示，AAV5neo在喙侧皮层的EGFP mRNA水平显著高于AAV5（图2C,D）
。这一结果提示，AAV5neo的脑内转导优势并非源于载体颗粒扩散距离更远，而是在相同基因组拷贝数的前提下，实现了更高的转基因表达效率，这与体外实验机制一致：脑内高丰度的唾液酸抑制了野生型AAV5的转导，而不依赖唾液酸的AAV5neo可更高效地接触细胞表面AAVR受体，完成有效转导
。

为更直观、精准地量化AAV5neo在全脑范围内的三维分布特征，研究团队在小鼠纹状体分别注射1E10GC的AAV5neo和AAV5载体，并进行全脑组织透明化成像
。三维重建图像结果显示，同为纹状体定点注射，AAV5neo的EGFP信号可广泛扩散至大脑皮层等区域，而AAV5的表达更集中于注射位点周边，整体分布范围更局限
。

跨物种脑内验证

AAV5neo表现出更优的转导与脑内分布，

低剂量实现NHP脑内α-突触核蛋白沉默

啮齿类动物的脑结构与人类差异较大，大动物模型的验证是临床转化的关键环节
。研究团队在Libechov小型猪双侧壳核分别注射同等剂量的（1E12GC）的AAV5或AAV5neo，四周后评估脑内转导情况，发现AAV5neo的转导范围显著高于AAV5，通过单细胞核RNA测序（snRNA）分析了AAV5neo转导的细胞类型，发现EGFP阳性细胞主要为少突胶质细胞和神经元（在神经元密度较高的尾状核中，EGFP阳性细胞里约47.5%为神经元，25%为少突胶质细胞，7%为星形胶质细胞；而在额叶白质中，83%的转导细胞为少突胶质细胞，神经元与星形胶质细胞各占3.6%）
。

为进一步验证AAV5neo的临床转化价值，研究团队在非人灵长类动物模型中借助AAV5neo搭载α-突触核蛋白的microRNA（AAV5neo-CBA-miSNCA，一种针对帕金森病的在研治疗策略）注射食蟹猴壳核中，以评估其功能疗效
。8周后的结果显示：与上述Libechov小型猪结果类似，AAV5neo主要转导壳核神经元（约54.9%）
。通过分子生物学技术发现，AAV5neo低-中剂量（2E12GC）组在壳核、丘脑中的基因组拷贝数分别约为AAV5低剂量（1.1E12GC）组的60倍和37倍，与AAV5中剂量（4.8E12GC）、高剂量（2.3E12GC）组的水平相当
。 

转基因表达与功能层面结果显示，AAV5neo的miRNA表达水平与AAV5中、高剂量组相当，且AAV5neo介导的miSNCA可使壳核、苍白球与丘脑三个脑区的SNCA mRNA水平下降60%-95%，SNCA蛋白水平下降35%-70%，沉默效果与较高剂量组的AAV5相当
。这一结果充分证明，AAV5neo可在显著降低给药剂量的前提下，实现与其亲本AAV5相当甚至更优的治疗性基因沉默效果，具备极高的临床转化价值
。

结论

本研究通过理性设计对AAV5衣壳的唾液酸结合位点进行单氨基酸突变，成功构建了脑内转导效率更优扩散范围更广的新型变体AAV5neo
。

机制上，M569V突变消除了载体转导对唾液酸的依赖性，但保留了与AAVR受体的结合能力，从而突破了脑内高丰度唾液酸对AAV5的竞争性抑制，使载体颗粒在脑实质扩散过程中能更高效地结合细胞受体完成转导
。

从小鼠、小型猪到非人灵长类的跨物种体内实验一致证实，AAV5neo经脑实质直接注射后，可在更低剂量下达到亲本AAV5的转基因表达与治疗效果，且转导范围更广，可有效覆盖皮层、丘脑等远端脑区
。AAV5neo的开发为中枢神经系统局部基因疗法提供了更高效的载体工具，其低剂量、广分布的特性可减少注射位点数及病毒总量，进而降低免疫反应风险与手术难度，在帕金森病、亨廷顿病等中枢神经退行性疾病的基因治疗中具备广阔的应用前景
。